Evaluación del efecto antibacteriano sinérgico de rifamicina en propóleo sobre bacterias grampositivas

Héctor Alexander Vílchez Cáceda, Luis Adolfo Cervantes Ganoza

Texto completo:

HTML PDF XML

Resumen

Introducción: En la medicina militar, la aplicación de las sustancias antibacterianas en las infecciones tópicas, son importantes en el tratamiento de las tropas.
Objetivos: Evaluar el efecto antibacteriano sinérgico de rifamicina en propóleo sobre bacterias grampositivas.
Métodos: Estudio experimental in vitro y comparativo. Se efectuó el análisis fitoquímico preliminar del propóleo de Apis mellífera. Se utilizaron 96 placas de agar Muller Hinton (Britania®) (48 placas para cada especie bacteriana) repartidas en 6 grupos (n = 8). grupo I (agua destilada), grupo II (alcohol etílico al 96 %), grupo III (rifamicina al 0,5 %), grupo IV (rifamicina al 1 %), grupo V (propóleo al 20 %) y grupo VI (rifamicina al 1 % en propóleo al 40 %); se empleó la metodología de Kirby - Bauer; las cepas usadas fueron Staphylococcus aureus ATCC 25923, Streptococcus pyogenes ATCC 19615 y las mediciones de las zonas de inhibición se efectuaron a las 24 horas.
Resultados: Se detectaron compuestos fenólicos, taninos, flavonoides, alcaloides y triterpenoides en propóleo. Se comprobó el efecto antibacteriano del grupo V con 18,627 ± 0,1008 mm (92,59 %) y 19,247 ± 0,0762 mm (96,74 %), y el efecto antibacteriano sinérgico del grupo VI con 19,316 ± 0,1202 mm (96,02 %) y 19,613 ± 0,0820 mm (98,58 %), comparados con rifamicina al 1 % (100 %) sobre S. aureus ATCC 25923 y S. pyogenes ATCC 19615.
Conclusiones: La combinación de rifamicina al 1 % unida al propóleo al 40 % presenta una mayor actividad antibacteriana in vitro sobre bacterias grampositivas debido a su efecto sinérgico.

Palabras clave

efecto antibacteriano; Kirby-Bauer; propóleo; rifamicina.

Referencias

Blackbourne LH, Baer DG, Eastridge BJ, Kheirabadi B, Bagley S, Kragh JF Jr, et al. Military medical revolution: prehospital combat casualty care. J Trauma Acute Care Surg. 2012 [acceso: 06/07/2021]; 73(6 Suppl 5): S372-S377. Disponible en: https://journals.lww.com/jtrauma/Fulltext/2012/12005/Military_medical_revolution___-Prehospital_combat.2.aspx

Martínez J, García C, Durango D, Gil J. Caracterización de propóleos provenientes del municipio de Caldas obtenido por dos métodos de recolección. Rev. MVZ Córdova. 2012 [acceso: 01/03/2021]; 17(1): 2861-2869. Disponible en: https://revistamvz.unicordoba.edu.co/article/view/254/323

Rodríguez L, Miranda A, Escalona A, Góngora W, Batista S, Cobos D. Investigación básica experimental para la definición de los parámetros críticos en el proceso de obtención de soluciones concentradas de propóleos (SCP). Rev. Colomb. Cienc. Quim. Farm. 2016 [acceso: 01/03/2021]; 45(2): 179-200. Disponible en: http://www.scielo.org.co/pdf/rccqf/v45n2/v45n2a01.pdf

Chen Y, Ye S, Ting C, Yu Y. Antibacterial activity of propolins from Taiwanese green propolis. Journal of food and drug análisis. 2018 [acceso: 02/03/2021]; 26(2):761-8. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29567247/

Hegazi A, Abd El Hady F, Abd Allah F. Chemical Composition and Antimicrobial Activity of European Propolis. Zeitschrift für Naturforschung C. 2000 [acceso: 02/03/2021]; 55(1-2):70-5. Disponible en: https://www.degruyter.com/document/doi/10.1515/znc-2000-1-214/html

Oryan A, Alemzadeh E, Moshiri A. Potential role of propolis in wound healing: Biological properties and therapeutic activities. Biomedicine & pharmacotherapy. 2018 [acceso: 02/03/2021]; 98(1): 469-483. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29287194/

Przybyłek I, Karpiński T. Antibacterial Properties of propolis. Molecules (Basel, Switzerland). 2019 [acceso: 02/03/2021]; 24(11): 1-17. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6600457/

Stepanović S, Antić N, Dakić I, Svabić-Vlahović M. In vitro antimicrobial activity of propolis and synergism between propolis and antimicrobial drugs. Microbiol Res. 2003 [acceso: 03/03/2021];158(4): 353-7. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14717457/

Nazeri R, Ghaiour M, Abbasi S. Evaluation of Antibacterial Effect of propolis and its Application in Mouthwash Production. Frontiers in dentistry. 2019 [acceso: 03/03/2021]; 16(1): 1-12. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31608331/

Fernandes A, Balestrin E, Betoni J, Orsi R, Da Cunha M, Montelli A. propolis: anti-Staphylococcus aureus activity and synergism with antimicrobial drugs. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2005 [acceso: 03/03/2021];100(5): 563-6. Disponible en: https://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0074-02762005000500018

Tito H, Amoroso A, Aponte P, Ross N, Olivero F. Utilización de propóleos en heridas complejas. Rev. Argent. Ciruj. Plást. 2017 [acceso: 04/03/2021]; 23(2):65-71. Disponible en: http://adm.meducatium.com.ar/contenido/articulos/12200650071_833/pdf/122006500-71.pdf

Takaisi-Kikuni N, Schilcher H. Electrón microscopic and microcalorimetric investigations of the possible mechanism of the antibacterial action of a defined propolis provenance. Planta Med. 1994 [acceso: 04/03/2021]; 6(3): 222-7. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8073087/

Okińczyc P, Paluch E, Franiczek R, Widelski J, Wojtanowski K, Mroczek T, et al. Antimicrobial activity of Apis mellifera L. and Trigona sp. propolis from Nepal and its phytochemical análisis. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2020 [acceso: 04/03/2021]; 129(1): 1-10. Disponible en: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0753332220306284

Sáenz E, Sánchez L. Antibióticos tópicos. Dermatología Peruana. 2005 [acceso: 05/03/2021];15(1):7-20. Disponible en: https://www.dermatologiaperuana.pe/assets/uploads/revista_a1XZ_a02.pdf

Katzung B. Farmacología Básica y Clínica. 14 ed. España: Editorial McGraw-Hill; 2019.

Centro Nacional de Información Biotecnológica. Rifamicina. USA: PubChem; 2021. [acceso: 05/03/2021]. Disponible en: https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Rifamycin

Dinç C, Tuncer C, Türkoğlu ME, Tokmak M, Ocak P, Er U. Effect of topical rifamycin application on epidural fibrosis in rats. Turk J Phys Med Rehabil. 2019 [acceso: 05/03/2021]; 65(1):24-9. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6648180/

Merck KGaA. Rifamycin SV sodium salt. Germany: Sigma-Aldrich; 2021. [acceso: 05/03/2021]. Disponible en: https://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/r8626?lang=en&region=PE&cm_sp-=Insite-_-caContent_prodMerch_gruCrossEntropy-_-prodMerch10-2

González J, Maguiña C, González F. La resistencia a los antibióticos: un problema muy serio. Acta Méd. Perú. 2019 [acceso: 06/03/2021]; 36(2):145-51. Disponible en: https://amp.cmp.org.pe/index.php/AMP/article/view/816/375

Serra M. La Resistencia microbiana en el context actual y la importancia del conocimiento y aplicación en la política antimicrobiana. Rev. Haban. Cienc. Méd. 2017 [acceso: 06/03/2021];16(3): 402-19. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1729-519X2017000300011

Krol W, Scheller S, Shani J, Pietsz G, Czuba Z. Synergistic effect of ethanolic extract of propolis and antibiotics on the growth of Staphylococcus aureus. Arzneimittelforschung. 1993 [acceso: 06/03/2021]; 43(5):607-9. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8329008/

Vilchez H, Cervantes L, Inocente M. Uso de la miel de Apis mellífera en agar base para diferenciar cepas bacterianas con características oxidativa-fermentadora. Ars Pharmacéutica. 2019 [acceso: 07/03/2021]; 60(2):119-124. Disponible en: http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S2340-98942019000200119

Bravo L. Farmacognosia. 1ed. Madrid: Editorial Elsevier; 2003.

Lock de Ugaz O. Investigación fitoquímica: Métodos de estudios de productos naturales. 3ed. Lima: Editorial Pontificia Universidad Católica del Perú; 2016.

Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests. M02, 13th ed. USA: CLSI; 2018. [acceso: 07/03/2021]. Disponible en: https://kaldur.landspitali.is/focal/gaedahandbaekur/gnhsykla.nsf/5e27f2e5a88c898e0-0256500003c98c2/94e1f81249a5e5560025756d005a560f/$FILE/M02Ed13E%20Perfo-rmance%20Standards%20for%20Antimicrobial%20Disk%20Susceptibility%20Tests.pdf

Laboratorios Britania. Medios de cultivo deshidratados. Argentina: Britania; 2015. [acceso: 07/03/2021]. Disponible en: https://www.britanialab.com/productos/filtrar/2/medios_de_cultivo_deshidratados

Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn W. Diagnóstico Microbiológico. Texto y atlas color. 6 ed. Buenos Aires: Editorial Médica Panamericana; 2006.

Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. M100, 30th ed. USA: CLSI; 2020. [acceso: 07/03/2021]. Disponible en: https://www.nih.org.pk/wp-content/uploads/2021/02/CLSI-2020.pdf

Organización Mundial de la Salud. Manual de Bioseguridad en el Laboratorio. 3a ed. Ginebra: OMS; 2005.

Cruz A, Rodríguez N, Rodríguez C. EvaluaciónIn vitro del efecto antibacteriano de los extractos deBidens pilosa, Lantana cámara, Schinus molle y Silybum marianum. Rev. U.D.C.A Act. Div. Cient. 2010 [acceso: 09/03/2021];13(2):117-24. Disponible en: https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/view/738/788

Duraffourd C, D'hervocourt L, Lapraz J. Cuadernos de fitoterápia Clínica. 1ed. Barcelona: Editorial Masson; 1986.

Ministerio de Agricultura y Riego. Plan Nacional de Desarrollo Apícola. 2015-2025. Perú: Minagri; 2015. [acceso: 10/03/2021]. Disponible en: https://bit.ly/2DXZ5ew

Bearden DT, Allen GP, Christensen JM. Comparative in vitro activities of topical wounds care products against community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J. Antimicrod. Chemother. 2008 [acceso: 11/03/2021]; 62(2): 915-23. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2721705/

Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.


URL de la licencia: https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/deed.es